Влияние плотности посадки на результаты содержания в искусственных условиях австралийского красноклешневого рака с иммобилизованными клешнями

Обсуждаются данные, полученные при проведении эксперимента о влиянии плотности посадки (150, 255 и 350 экз./м²) австралийского красноклешневого рака с иммобилизованными клешнями (первой пары грудных конечностей) на приросты длины и массы тела, продолжительность межлиночных интервалов, количество совершенных линек и выживаемость в трех равных по площади дна секциях аквариума. По окончании эксперимента (120 дней) выживаемость раков в первой секции сократилась до 75 экз./м² (50,0 %), во второй — до 102 экз./м² (40,0 %) и в третьей до — 114 экз./м² (37,5 %). Раки в первой секции были менее агрессивны по отношению к своим сородичам, испытывали минимальный стресс, доля погибших особей во время линьки была ниже, чем в других секциях, и составила 35 %. Показано, что в процессе эксперимента во всех трех секциях количество погибших особей в межлиночный период составило 15,0–17,5 %. 

1. Анкешева Б.М., Тангатарова Р.Р., Пятикопова О.В. Формирование ремонтно-маточного стада австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) в индустриальной аквакультуре // Изв. ТИНРО. — 2021. — Т. 201, вып. 4. — С. 948–959. DOI: 10.26428/1606-9919-2021-201-948-959.

2. Анцупова А.М., Шумейко Д.В., Скафарь Д.Н. и др. Влияние растворов хлорида натрия на рост и выживаемость молоди австралийского красноклешневого рака // Тр. ВНИРО. — 2023. — Т. 194. — С. 143–154. DOI: 10.36038/2307-3497-2023-194-143-154.

3. Борисов Р.Р. Морфология и поведение десятиногих ракообразных (Crustacea: Decapoda) в постэмбриональном онтогенезе : дис. … д-ра биол. наук. — М. : ВНИРО, 2020. — 395 с.

4. Борисов Р.Р., Ковачева Н.П., Артемов Р.В. и др. Оценка эффекта применения комбикормов с различным уровнем белка для молоди австралийского красноклешневого рака в условиях УЗВ // Тр. ВНИРО. — 2022. — Т. 187. — С. 128–137. DOI: 10.36038/2307-3497-2022-187-128-137.

5. Борисов Р.Р., Ковачева Н.П., Паршин-Чудин А.В. Управление пространственным распределением десятиногих ракообразных (отр. Decapoda) при культивировании в искусственных условиях // Рыб. хоз-во. — 2014. — № 3. — С. 84–89.

6. Борисов Р.Р., Никонова И.Н. Особенности роста десятиногих ракообразных в рециркуляционных установках на примере австралийского рака Cherax quadricarinatus (Decapoda: Parastacidae) // Морской биологический журнал. — 2018. — Т. 3, № 3. — С. 3–12. DOI: 10.21072/MBJ.2018.03.3.01.

7. Брайнбалле Я. Руководство по аквакультуре в установках замкнутого водоснабжения. Введение в новые экологические и высокопродуктивные замкнутые рыбоводные системы. — Копенгаген : ФАО, 2010. — 70 с.

8. Жарников В.С., Никонова И.Н., Глазунов А.А. Особенности роста и выживаемости австралийского красноклешневого рака при иммобилизации клешней в искусственных условиях // Рыбоводство и рыбное хозяйство. — 2025. — № 2. — С. 102–114. DOI: 10.33920/sel-09-2502-03.

9. Жигин А.В. Замкнутые системы в аквакультуре : моногр. — М. : РГАУ-МСХА, 2011. — 664 с.

10. Пятикопова О.В., Бедрицкая И.Н., Попов Д.А., Тангатарова Р.Р. Опыт прудового выращивания красноклешневого рака в Астраханской области // Изв. ТИНРО. — 2024. — Т. 204, вып. 3. — С. 659–669. DOI: 10.26428/1606-9919-2024-204-659-669. EDN: MIEONV.

11. Хорошко А.В., Крючков В.Н. Новые направления прудовой аквакультуры в южных регионах России // Теоретические и прикладные проблемы агропромышленного комплекса. — 2010. — Т. 2. — С. 51–54.

12. Цукерзис Я.М., Шаштоякс И.А., Тамкявичене Е.А. Каннибализм у широкопалого рака // Тр. АН ЛитССР. Сер. В. — 1977. — Т. 3, № 79. — С. 97–103.

13. Aiken D.E., Young Lai W.W. Cheliped ablation and immobilization: methods for improving survival and growth of juvenile American lobster in commercial culture tanks // Proc. World Mariculture. Soc. — 1979. — Vol. 10. — P. 159–161.

14. Aiken D.E., Young-Lai W.W. Dactylotomy, chelotomy and dactylostasis. Methods for enhancing survival and growth of small lobsters (Homarus americanus) in communal conditions // Aquaculture. — 1981. — Vol. 22. — P. 45–52. DOI: 10.1016/0044-8486(81)90132-0.

15. Barki A., Levi T., Shrem A., Karplus I. Ration and spatial distribution of feed affect survival, growth and competition in juvenile red-claw crayfish, Cherax quadricarinatus, reared in the laboratory // Aquaculture. — 1997. — Vol. 148, № 2–3. — P. 169–177. DOI: 10.1016/S0044-8486(96)01418-4.

16. Cobb J.S., Tamm G.R. Dominance status and molt order in lobsters (Homarus americanus) // Mar. Behav. Physiol. — 1975. — Vol. 3, № 2. — P. 119–124. DOI: 10.1080/10236247509378501.

17. Cobb J.S., Tamm G.R. Social conditions increase intermolt period in juvenile lobsters, Homarus americanus // J. Fish. Res. Board Can. — 1974. — Vol. 32. — P. 1941–1943.

18. Cobb J.S., Tamm G.R., Wang D. Behavioral mechanisms influencing molt frequency in the American lobster, Homarus americanus Milne Edwards // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. — 1982. — Vol. 62, № 3. — P. 185–200. DOI: 10.1016/0022-0981(82)90200-3.

19. De Bock M.S., López Greco L.S. Sex reversal and growth performance in juvenile females of the freshwater crayfish Cherax quadricarinatus (Parastacidae): effect of increasing temperature and androgenic gland extract in the diet // Aquacult. Int. — 2010. — № 18. — P. 231–243. DOI: 10.1007/s10499-008-9239-x.

20. Jones C.M., Ruscoe I.M. Assessment of stocking size and density in the production of redclaw crayfish, Cherax quadricarinatus (von Martens) (Decapoda: Parastacidae), cultured under earthen pond conditions // Aquaculture. — 2000. — Vol. 189, № 1–2. — P. 63–71. DOI: 10.1016/S0044-8486(00)00359-8.

21. Karplus I., Barki A., Levi T. et al. Effects of kinship and shelters on growth and survival of juvenile Australian redclaw crayfish (Cherax quadricarinatus) // Freshw. Crayfish. — 1995. — Vol. 10. — P. 494–505.

22. Karplus I., Hulata G., Ovadia D., Jaffe R. Social control of growth in Macrobrachium rosenbergii. III. The role of claws in bull-runt interactions // Aquaculture. — 1992. — Vol. 105, № 3–4. — P. 281–296. DOI: 10.1016/0044-8486(92)90093-Z.

23. Kendall R.A., Van Olst J.C., Carlberg J.M. Effects of chelae immobilization on growth and survivorship for individually and communally raised lobsters, Homarus americanus // Aquaculture. — 1982. — Vol. 29, № 3–4. — P. 359–372. DOI: 10.1016/0044-8486(82)90148-X.

24. Lawrence C., Jones C. Chapter Cherax // Biology of Freshwater Crayfish. — Oxford : Blackwell Science, 2002. — P. 635–670.

25. Pinto G.F., Rouse D.B. Growth and survival of the Australian red claw crayfish Cherax quadricarinatus at three densities in earthen ponds // J. World Aquacul. Soc. — 1996. — Vol. 27, № 2. — P. 187–193. DOI: 10.1111/j.1749-7345.1996.tb00268.x.

26. Saoud I.P., Ghanawi J., Thompson K.R., Webster C.D. A Review of the Culture and Diseases of Redclaw Crayfish Cherax quadricarinatus (Von Martens 1868) // J. World Aquacul. Soc. — 2013. — Vol. 44, № 1. — P. 1–29. DOI: 10.1111/jwas.12011.

27. Storer T.J. Ethology and production of freshwater crayfish in aquatic polysystems in Western Australia : thesis of Doctor of Philosophy. — Curtin : Univ. of Technolog, 2005. — 370 p.

28. Xiaoxuan C., Zhixin W., Licai H. Effects of water temperature on ingestion and growth of Cherax quadricarinatus // J. Huazhong (Central China) Agricultural University. — 1995. — Vol. 14(5). — P. 477–480.