Качественные и количественные характеристики бактериопланктона и бактериобентоса на участках естественного и искусственного воспроизводства приморского гребешка Mizuhopecten yessoensis в зал. Анива (о. Сахалин)

Представлены результаты микробиологических исследований воды и донных отложений, выполненных с мая по октябрь 2024 г. на участках естественного и искусственного воспроизводства приморского гребешка в зал. Анива. Общая численность бактериопланктона на участках в поверхностном горизонте варьировала в пределах 0,50–2,14, в придонном — 0,80–1,24 млн кл./мл, биомасса — соответственно 37,13–220,42 и 69,99–161,12 мг/м³. Концентрация бактериопланктона соответствовала мезотрофноэвтрофным водам. Уровень численности сапротрофных бактерий в поверхностном слое менялся в течение периода исследований от 10² до 10⁵ кл./мл. В придонном слое и донных осадках сезонные изменения концентрации сапротрофной группы отсутствовали, диапазон численности ограничивался показателями в десятки-сотни тысяч клеток на миллиметр. Индикаторная санитарно-показательная микрофлора не выявлена, что свидетельствовало об отсутствии антропогенного влияния на участки. В воде и донных осадках обнаружены этиологически значимые бактерии Vibrio parahaemolyticus — возбудители пищевой токсикоинфекции у человека.

1. Байтаз В.А., Байтаз О.Н., Мишустина И.Е. Морфометрия клеток, численность и биомасса основных морфологических групп бактериопланктона Баренцева моря // Океанол. — 1996. — Т. 36, № 6. — С. 883–887.

2. Баубекова Д.Г., Проскурина В.В. Оценка влияния абиотических факторов на гетеротрофные бактериоценозы воды и донных отложений в северной части Каспийского моря // Водное хозяйство России: проблемы, технологии, управление. — 2023. — № 5. — С. 71–84. DOI: 10.35567/19994508_2023_5_6.

3. Беленева И.А., Жукова Н.В., Лу Лан Х., Нгуен Тран Д.Х. Таксономический состав микрофлоры, ассоциированной с культивируемыми моллюсками Crassostrea lugubris и Perna viridis и с водой в лагуне залива Нячанг, Вьетнам // Микробиология. — 2007. — Т. 76, № 2. — С. 253–262.

4. Белькова Н.Л., Андреева А.М. Введение в молекулярную экологию микроорганизмов : учебно-методическое пособие. — Ярославль : Принтхаус, 2009. — 91 с.

5. Бойченко Т.В., Галышева Ю.А. Эколого-функциональные группы бактерий в поверхностных водах и донных отложениях бухты Золотой Рог (залив Петра Великого, Японское море) // Актуальные научные исследования : сб. статей Междунар. науч.-практ. конф. — Пенза : Наука и Просвещение, 2021. — С. 19–26.

6. Вербина Н.М. Гидромикробиология с основами общей микробиологии : учеб. пособие. — М. : Пищ. пром-сть, 1980. — 288 с.

7. Гаврилова Г.С., Мотора З.И., Поздняков С.Е. Результаты исследований состояния приморского гребешка (Mizuhopecten yessoensis) на плантациях марикультуры Приморья // Изв. ТИНРО. — 2021. — Т. 201, вып. 4. — С. 895–909. DOI: 10.26428/1606-9919-2021-201-895-909. EDN: WYCLDU.

8. Гордиенко А.П., Ерохин В.Е. Морфологическая структура бактериопланктона открытых акваторий Средиземноморского бассейна // Биодиагностика состояния природных и природнотехногенных систем : мат-лы 17-й Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием. — Киров : ВятГУ, 2019. — Кн. 1. — С. 276–280.

9. Григорьева Н.И. Эколого-гидрологическая характеристика залива Посьета как района культивирования моллюсков : дис. … канд. биол. наук. — Владивосток, 1999. — 136 с.

10. Журавель Е.В., Христофорова Н.К., Дроздовская О.А., Токарчук Т.Н. Оценка состояния залива Восток (залив Петра Великого, Японское море) по гидрохимическим и микробиологическим показателям // Изв. Самар. науч. центра Российской академии наук. — 2012. — Т. 14, № 1–9. — С. 2325–2329.

11. Лаженцева Л.Ю., Шульгина Л.В., Гришин А.С. и др. Микробиологическая оценка анадары (Anadara broughtoni) зал. Петра Великого // Изв. ТИНРО. — 2004. — Т. 138. — С. 389–396.

12. Масленников С.И., Щукина Г.Ф. Взаимодействие плантаций марикультуры и морских прибрежных экосистем // Рыб. хоз-во. — 2018. — № 4. — С. 96–99.

13. Мишустина И.Е., Щеглова И.К., Мицкевич И.Н. Морская микробиология : учеб. пособие. — Владивосток : ДВГУ, 1985. — 184 с.

14. Морозова М.А., Рыбальченко А.Д., Бугаев Л.А., Стрижакова Т.В. Аналитический обзор по наиболее значимым бактериальным заболеваниям морских двустворчатых моллюсков // Ветеринарная патология. — 2020. — № 3(73). — С. 48–53. DOI: 10.25690/VETPAT.2020.24.39.002.

15. Огородникова А.А. Эколого-экономическая оценка воздействия береговых источников загрязнения на природную среду и биоресурсы залива Петра Великого : моногр. — Владивосток : ТИНРО-центр, 2001. — 193 с.

16. Оксиюк О.П., Жукинский В.Н., Брагинский Л.П. и др. Комплексная экологическая классификация качества поверхностных вод суши // Гидробиол. журн. — 1993. — Т. 29, № 4. — С. 62–76.

17. Полтева А.В. Индикаторные группы гетеротрофных микроорганизмов прибрежных вод залива Анива (пос. Пригородное) // Тр. СахНИРО. — 2005. — Т. 7. — С. 385–392.

18. Пученкова С.Г. Санитарно-микробиологические исследования устриц и морской воды у побережья Северного Кавказа // Гигиена и санитария. — 1991. — № 3. — С. 22–24.

19. Родина А.Г. Методы водной микробиологии : практическое руководство. — М. ; Л. : Наука, 1965. — 363 с.

20. Руководство по методам биологического анализа морской воды и донных отложений / под ред. А.В. Цыбань. — Л. : Гидрометеоиздат, 1980. — 193 с.

21. Сорокин Ю.И., Сорокин П.Ю., Мамаева Т.И., Сорокина О.В. Бактериопланктон и планктонные инфузории в Охотском море // Комплексные исследования экосистемы Охотского моря. — М. : ВНИРО, 1997. — С. 210–216.

22. Чуприна Е.В. Экологическое взаимодействие морской аквакультуры и окружающей среды // Экология гидросферы. — 2023. — № 1(9). — С. 1–7.

23. Cao X., Zhao L., Zhanga J. et al. Detection of viable but nonculturable Vibrio parahaemolyticus in shrimp samples using improved real-time PCR and real-time LAMP methods // Food Control. — 2019. — Vol. 103(4). — P. 145–152. DOI: 10.1016/j.foodcont.2019.04.003.

24. Cavallo R.A., Rizzi C., Vozza T., Stabili L. Viable heterotrophic bacteria in water and sediment in «Mar Piccolo» of Taranto (Ionian Sea, Italy) // J. Appl. Microbiol. — 1999. — Vol. 86, № 6. — P. 906–916. DOI: 10.1046/j.1365-2672.1999.00767.x.

25. Felsing M., Glencross B., Telfer T. Preliminary study on the effects of exclusion of wild fauna from aquaculture cages in a shallow marine environment // Aquaculture. — 2005. — Vol. 243. — P. 159–174.

26. Forrest B., Cornelisen C., Clement D. et al. Monitoring framework for the Waikato Coastal Marine Area: Report 2 — Regional aquaculture monitoring priorities and guidance : Waikato Regional Council Technical Report 15/39. — Cawthron Report No. 2429. — 2015. — 67 p.

27. Liu R., Qiu L.M., Yu Z. et al. Identification and characterisation of pathogenic Vibrio splendidus from Yesso scallop (Patinopecten yessoensis) cultured in a low temperature environment // J. Invertebr. Pathol. — 2013. — Vol. 114(2). — P. 144–150. DOI: 10.1016/j.jip.2013.07.005.

28. Plew D.R. Shellfish farm-induced changes to tidal circulation in an embayment, and implications for seston depletion // Aquac. Environ. Interact. — 2011. — Vol. 1(3). — P. 201–214. DOI: 10.3354/aei00020.

29. Sawabe T., Kita-Tsukamoto К., Thompson F.L. Inferring the Evolutionary History of Vibrios by Means of Multilocus Sequence Analysis // J. Bacteriol. — 2007. — Vol. 189, № 21. — P. 7932–7936. DOI: 10.1128/JB.00693-07.

30. Thompson F.L., Iida T., Swings J. Biodiversity of Vibrios // Microbiol. Mol. Biol. Rev. — 2004. — Vol. 68, № 3. — P. 403–431. DOI: 10.1128/MMBR.68.3.403-431.2004.

31. Tun Т. A review of mass mortalities in pearl oysters // SPC Pearl Oyster Information Bulletin. — 2000. — № 14. — P. 17–20.

32. MU № 2260-80. Metodicheskiye ukazaniya po gigiyenicheskomu kontrolyu zagryazneniya morskoy sredy (MU No. 2260-80. Methodological guidelines for hygienic control of pollution of the marine environment), Moscow: USSR Ministry of Health, 1981.